1) Penicillin V acylase
青霉素V酰化酶
1.
Penicillin V acylase from the crude culture filtrate of Fusarium oxysporum FP 941 was purified with a single band on non-denaturing electrophoresis by means of (NH4)2SO4 fractional precipitation, adsorption on, and elution from, celite, ion-exchange column chromatography with DEAE-cellulose, and Sephadex G-200 gel filtration chromatography.
通过硫酸铵沉淀、硅藻土吸附、DEAD-纤维素离子交换层析和Sephadex G-200凝胶过滤,由尖镰孢(Fusarium oxysporum)FP941培养滤液中得到了聚丙烯酰胺凝胶电泳均一的青霉素V酰化酶。
2) Penicillin G acylase
青霉素G酰化酶
1.
Purification and Crystalline of Penicillin G Acylase;
大肠杆菌108(pPAHD1)青霉素G酰化酶的纯化与结晶
2.
Site-directed mutagenesis of B.megaterium penicillin G acylase and its kinetics;
巨大芽孢杆菌青霉素G酰化酶的定点突变及其动力学性质研究
3.
Site-directed Mutagenesis at Ser177 of Penicillin G Acylase Gene;
青霉素G酰化酶基因Ser177的定点突变
3) Penicillin G acylase
青霉素酰化酶
1.
Immobilization of penicillin G acylase with a layer material ——ayered double hydroxide;
层状材料水滑石固定青霉素酰化酶的研究
2.
Penicillin G acylase can catalyze the cleavage of the amide bond in the benzyl penicillin(penicillin G)side-chain to yield phenylacetic acid and 6-aminopenicillanic acid(6-APA).
利用扩孔剂的作用合成出较大孔径(12nm)的介孔材料SBA-15,并进行表面氨基修饰,以此为载体,以戊二醛为交联剂,对青霉素酰化酶进行组装固定,并对固定化青霉素酰化酶(PGA)的稳定性进行了深入的研究。
3.
The structural characteristics,surface properties and immobilization for penicillin G acylase(PGA) of the mesoporous supports were investigated by XRD,N2-adsorption and FT-IR spectrum.
采用XRD、低温N2吸附及FT-IR等方法研究了介孔载体的结构特征、表面酸性和对青霉素酰化酶(Penicillin G Acylase,PGA)的固定化作用。
4) penicillin acylase
青霉素酰化酶
1.
Immobilization of penicillin acylase by intensive adsorption of chitosan on celite;
硅藻土强化吸附壳聚糖固定化青霉素酰化酶
2.
Applications of flocculating agents in extraction of penicillin acylase;
絮凝剂在青霉素酰化酶提取中的应用
3.
A New Carrier for immobilization of penicillin acylase;
固定化青霉素酰化酶的新载体
5) penicillin G amidase
青霉素酰化酶
1.
Reactive, macroporous and beaded glycidyl methacrylate (GM) copolymer bearing epoxy groups and amide groups was synthesized by inverse suspension polymerization and used as the support for the immobilization of penicillin G amidase (PGA).
用共价键合法将青霉素酰化酶固定化在珠状多孔的甲基丙烯酸缩水甘油酯 (GM)共聚物上 ,研究了固定化反应时间、温度、pH值和酶液用量对固定化青霉素酰化酶的表观活性、表观偶联效率、活性回收及稳定性的影响 。
2.
Reactive, macroporous and beaded glycidyl methacrylate copolymer bearing oxirane groups and amide groups was synthesized by inverse suspension polymerization and used as the support for the immobilization of penicillin G amidase.
应用反相悬浮技术合成了珠状甲基丙烯酸缩水甘油酯 - N ,N′-亚甲基双 (丙烯酰胺 )共聚物 ,并将巨大芽孢杆菌 ( Bacillus megaterium)青霉素酰化酶共价偶联到甲基丙烯酸缩水甘油酯共聚物载体上 ,制成固定化青霉素酰化酶 ,其表观活性为 3 71 U/g(干重 ) ,水解青霉素 G钾盐的最适温度为 47°C,最适 p H为 8。
3.
Mesoporous molecular sieve MCM - 41 has been used as the support for the immobilization of penicillin G amidase(PGA) .
通过改变酶固定化时的pH值、温度、时间以及酶用量,研究了固定化条件对MCM-41载体上固定化青霉素酰化酶的酶活及其稳定性的影响,明确了酶活及其稳定性随固定化条件的变化规律,初步分析了青霉素酰化酶在介孔分子筛MCM-41上的固定化过程。
6) penicillin acylase
青霉素G酰化酶
1.
The immobilized penicillin acylase from E.
采用肽键法将青霉素G酰化酶固定在功能化的聚丙烯酸甲酯上得固定化酶 ,其最适pH为8。
补充资料：青霉素
沿革 1928年，英国细菌学家A.弗莱明在实验室发现了青霉素及其抑菌作用，1938～1941年H.W.F.弗洛里和E.B.钱恩经分离制得青霉素，并发现它对许多严重的全身性细菌感染有良好治疗效果，是一个高效低毒抗生素。青霉素的出现，在医学上开创了抗生素药物治疗的历史，对治疗人畜炎症起到十分重要的作用。青霉素生产初期，在克氏培养瓶中进行表面培养，浓度仅能达到每毫升8～12单位。这样，几百个瓶子生产的量,只够一个病人使用。直到1943年，才试验成功在发酵罐里，采用通气搅拌的深层培养法生产青霉素。
目前，生产青霉素的发酵罐体积已扩大到百吨以上，发酵液浓度已达每毫升 60000单位左右。但随着青霉素的大量使用,细菌对青霉素产生的耐药现象日趋严重,尤其是金黄色葡萄球菌耐药菌株的蔓延已成临床上一个严重问题。其次，青霉素还存在抗菌谱不够广，易引起过敏反应等问题,因而其应用受到限制。1959年,美国J.C.希亨和K.R.亨利－朗根从青霉素发酵液中分离出青霉素母核6APA并成功地合成了第一个半合成青霉素──苯氧乙基青霉素。从此开始了对青霉素结构改造的研究，用微生物合成与化学合成相结合的方法，生产很多各具特点的新型半合成青霉素，使青霉素类得到更广泛的应用。
生产方法 天然青霉素与半合成青霉素生产方法完全不同。
天然青霉素 青霉素 G生产可分为菌种发酵和提取精制两个步骤。①菌种发酵：将产黄青霉菌接种到固体培养基上，在25℃下培养 7～10天，即可得青霉菌孢子培养物。用无菌水将孢子制成悬浮液接种到种子罐内已灭菌的培养基中，通入无菌空气、搅拌，在27℃下培养24～28h,然后将种子培养液接种到发酵罐（见彩图）已灭菌的含有苯乙酸前体的培养基中，通入无菌空气,搅拌，在27℃下培养7天。在发酵过程中需补入苯乙酸前体及适量的培养基。②提取精制：将青霉素发酵液冷却，过滤。滤液在pH2～2.5的条件下,于萃取机内用醋酸丁酯进行多级逆流萃取,得到丁酯萃取液（见彩图），转入pH7.0～7.2的缓冲液中，然后再转入丁酯中，将此丁酯萃取液经活性炭脱色，加入成盐剂，经共沸蒸馏即可得青霉素G钾盐。青霉素G钠盐是将青霉素 G钾盐通过离子交换树脂（钠型）而制得。
半合成青霉素 以6APA为中间体与多种化学合成有机酸进行酰化反应，可制得各种类型的半合成青霉素。
6APA是利用微生物产生的青霉素酰化酶裂解青霉素G或 V而得到。酶反应一般在40～50℃、pH8～10的条件下进行；近年来，酶固相化技术已应用于6APA生产，简化了裂解工艺过程。6APA也可从青霉素 G用化学法来裂解制得，但成本较高。侧链的引入系将相应的有机酸先用氯化剂制成酰氯，然后根据酰氯的稳定性在水或有机溶剂中，以无机或有机碱为缩合剂，与6APA进行酰化反应。缩合反应也可以在裂解液中直接进行而不需分离出6APA。
应用 由于青霉素对溶血性链球菌、肺炎双球菌、葡萄球菌、淋球菌、脑膜炎双球菌、破伤风杆菌和白喉杆菌等均有作用，常用于由上述细菌感染的蜂窝组织炎、肺炎、脑膜炎和脓肿等疾病的治疗。最近，半合成青霉素的品种发展很快，扩大了抗菌谱，对革兰氏阴性杆菌如大肠杆菌、绿脓杆菌等也都有良好的抑制作用。
目前，生产青霉素的发酵罐体积已扩大到百吨以上，发酵液浓度已达每毫升 60000单位左右。但随着青霉素的大量使用,细菌对青霉素产生的耐药现象日趋严重,尤其是金黄色葡萄球菌耐药菌株的蔓延已成临床上一个严重问题。其次，青霉素还存在抗菌谱不够广，易引起过敏反应等问题,因而其应用受到限制。1959年,美国J.C.希亨和K.R.亨利－朗根从青霉素发酵液中分离出青霉素母核6APA并成功地合成了第一个半合成青霉素──苯氧乙基青霉素。从此开始了对青霉素结构改造的研究，用微生物合成与化学合成相结合的方法，生产很多各具特点的新型半合成青霉素，使青霉素类得到更广泛的应用。
生产方法 天然青霉素与半合成青霉素生产方法完全不同。
天然青霉素 青霉素 G生产可分为菌种发酵和提取精制两个步骤。①菌种发酵：将产黄青霉菌接种到固体培养基上，在25℃下培养 7～10天，即可得青霉菌孢子培养物。用无菌水将孢子制成悬浮液接种到种子罐内已灭菌的培养基中，通入无菌空气、搅拌，在27℃下培养24～28h,然后将种子培养液接种到发酵罐（见彩图）已灭菌的含有苯乙酸前体的培养基中，通入无菌空气,搅拌，在27℃下培养7天。在发酵过程中需补入苯乙酸前体及适量的培养基。②提取精制：将青霉素发酵液冷却，过滤。滤液在pH2～2.5的条件下,于萃取机内用醋酸丁酯进行多级逆流萃取,得到丁酯萃取液（见彩图），转入pH7.0～7.2的缓冲液中，然后再转入丁酯中，将此丁酯萃取液经活性炭脱色，加入成盐剂，经共沸蒸馏即可得青霉素G钾盐。青霉素G钠盐是将青霉素 G钾盐通过离子交换树脂（钠型）而制得。
半合成青霉素 以6APA为中间体与多种化学合成有机酸进行酰化反应，可制得各种类型的半合成青霉素。
6APA是利用微生物产生的青霉素酰化酶裂解青霉素G或 V而得到。酶反应一般在40～50℃、pH8～10的条件下进行；近年来，酶固相化技术已应用于6APA生产，简化了裂解工艺过程。6APA也可从青霉素 G用化学法来裂解制得，但成本较高。侧链的引入系将相应的有机酸先用氯化剂制成酰氯，然后根据酰氯的稳定性在水或有机溶剂中，以无机或有机碱为缩合剂，与6APA进行酰化反应。缩合反应也可以在裂解液中直接进行而不需分离出6APA。
应用 由于青霉素对溶血性链球菌、肺炎双球菌、葡萄球菌、淋球菌、脑膜炎双球菌、破伤风杆菌和白喉杆菌等均有作用，常用于由上述细菌感染的蜂窝组织炎、肺炎、脑膜炎和脓肿等疾病的治疗。最近，半合成青霉素的品种发展很快，扩大了抗菌谱，对革兰氏阴性杆菌如大肠杆菌、绿脓杆菌等也都有良好的抑制作用。
说明：补充资料仅用于学习参考，请勿用于其它任何用途。
参考词条