1) Multi-pairs of chromosomes
多对染色体
2) extra-chromosome pair
染色体对
3) multi-chromosomes
多染色体
1.
The paper emphasizes particularly on proving that multi-chromosomes parallel genetic algorithm adopted in solving the optimization of multi-targets test paper ge.
采用多染色体并行遗传算法解决多目标试题组卷优化问题,就是按照不同的题型划分为多个染色体种群,然后根据每种题型的目标要求,并行进行遗传算法操作,将优化结果拟合成最终试卷。
4) multi-pairs of chromosomes genetic a
多对染色体遗传算法
5) Chromosome polysomy
染色体多体
6) chromosome pairing
染色体配对
1.
kamoji , the morphological characters and the aspects of interspecific hybridization, chromosome pairing and fertility of the three species and their F 1 hybrids were carefully examined in this study.
通过对鹅观草属犬草组长芒鹅观草、缘毛鹅观草和鹅观草 3个种及其种间杂种的形态变异、染色体配对行为和繁育特性进行研究 ,探讨这 3个种的亲缘关系。
2.
Chromosome pairing of first meiotic division in pollen mother cells (PMCs) of Actinidia deliciosa No.
不同细胞间染色体配对形式变化较大 ,一般以二价联会为主 ,其次由其它多种配对方式 (包括有复合配对、重复配对、着丝点或端粒处联合和多价联会 )形成多价体 ,还有少数未配对或发生内配对 (偶见 )的单价体和几条二价体之间的次级配对。
3.
Chromosome pairing behaviour at metaphaseⅠ and mophological characteristics in the parents and hybrids were studied.
无芒仲彬草分布于我国西部，属多年生六倍体植物，将其与鹅观草（2n=42，SSH－HYY）进行杂交，对亲本及杂种F1代花粉母细胞减数分裂中期Ⅰ染色体配对行为及形态学进行研究。
补充资料：多线染色体
一种缆状的巨大染色体，见于有些生物生命周期的某些阶段里的某些细胞中。由核内有丝分裂产生的多股染色单体平行排列而成。各染色单体上的染色粒（见灯刷染色体）并排排列，构成多线染色体的带，带与带之间则称间带。多线染色体的这种结构可用光学显微镜观察，也能在多线染色体上用原位分子杂交法进行基因定位，并就其结构与功能之间的关系进行系统研究，因此是细胞学和遗传学研究的有用材料。
1881年E.G.巴尔比安尼首先在双翅目摇蚊 (Chiro-nomus)幼虫的唾腺细胞中观察到多线染色体，但未引起注意。1933年在遗传学成就的影响下T.S.佩因特在果蝇唾腺,E.海茨和H.鲍尔等在毛蚊属(Bibio)再次看到这种染色体后，人们才予重视。此后在昆虫的多种组织如肠、气管、脂肪体细胞和马尔皮基氏管上皮细胞内以及在其他动植物的一些高度特化细胞如某些原生动物及附子属(Aconitum)植物的反足细胞里也发现了这种巨大染色体。
用显微镜观察多线染色体，只须把腺体等材料放在一滴固定剂和染色剂的混合液中用玻片压破腺体细胞核，即可看到多线染色体分散出来。
形态结构 并行排列的染色质纤维 多线染色体是DNA多次复制后所产生的子染色体整齐排列,紧密结合在一起而形成的 (图1)。它所在的细胞在此过程中处于永久间期阶段，不分裂，因而随着复制的不断进行，核体积不断增加，多线化细胞的体积也相应增大。
同种动物的不同组织以及不同动物的相同组织的多线化程度各不相同。例如摇蚊马尔皮基氏管细胞的染色体最多能复制 9次，从而使每对同源染色体组含有 512（29）条染色单体；唾腺细胞染色体复制13次，因而含有8192（213）条染色单体。
带和间带 沿着多线染色体的长轴有一系列深色的带和透亮的间带交替排列。带上的 DNA纤维高度卷曲，DNA 含量高，故能用碱性染料着色，呈孚尔根阳性反应，260纳米紫外光吸收强；间带的DNA含量低，不能用碱性染料着色,呈孚尔根阴性反应，260纳米紫外光吸收弱。
各种多线染色体上带的数目、形态、大小及其分布位置都很稳定。带和间带的分布图谱简称带谱。C.B.布里奇斯首先建立起黑腹果蝇唾腺染色体的带谱。至今已知该带的总数约有5000多条。图2示4条染色体，分别命名为X；2L(左臂)和2R(右臂);3L和3R；4。从X染色体的远端开始,依次将全部染色体分成102个区域。每一个区域可再进一步划分成A、B、C等小区域（图2）。从左边开始可将每个小区域里的带、间带和胀泡依次编号。不同带的形态和大小变化很大，同一条染色体在不同情况下其带谱不同。其他一些物种的详细带谱也有报道。
带谱与遗传图谱 把用杂交试验得到的果蝇多线染色体的遗传图谱与正常的带谱比较，可以看出每条带相当于一个遗传单位，并且可以鉴定出许多具有特殊遗传功能的带的位置。在特殊情况下，一条带可能同时有几个结构基因。例如,用原位杂交法曾经证明5SRNA基因的大部分拷贝位于2R的一条带(56F)上;组蛋白mRNA只能杂交到2L的两条带和它们之间的间带(39D-39E)上。
胀泡与基因表达 在个体发育的某个阶段或某些化学物质的诱发下，多线染色体的某些带纹变得疏松膨大而形成胀泡。最大的胀泡叫做巴尔比安尼氏环。胀泡是基因转寻和翻译的形态学标志,在这里DNA解旋呈开放环，RNA的合成很活跃；核糖体排列成多聚核糖体长链,多肽链的长度有一个梯度，甚至还可观察到从巴尔比安尼环上新合成的蛋白质分泌颗粒。
在一种摇蚊 (C.pallidivittatus)唾腺前叶细胞的染色体4上,近着丝点处有巴尔比安尼环4,这些细胞能分泌特异的蛋白质颗粒。然而,在另一种摇蚊(C.tentanus)中则没有巴尔比安尼环4,也没有这种分泌颗粒。这两种动物的杂交试验表明，编码分泌颗粒蛋白质的结构基因位于染色体4的巴尔比安尼环4上。
在尖眼蕈蚊 (Sciara coprophila)等动物还发现有一种非常特殊的胀泡──DNA胀泡。3H-胸腺嘧啶核苷和3H-尿嘧啶核苷能掺入这种胀泡。它们是额外的DNA复制区域（图3），其转录活性和5-甲基胞嘧啶含量之间有反相关性。
激素与胀泡 在双翅目昆虫唾腺的正常发育过程中，胀泡的出现是一种周期性的可逆现象。在一定的时期内，幼虫的不同组织里会有胀泡的出现、生长和消失过程。运用诱导胀泡形成的一些因子，如将蜕皮激素注射到幼虫或将它加入培养的唾腺中去则会在多线染色体上诱发出特殊的胀泡，所诱发胀泡的大小与所用激素的量有关。这些胀泡也出现在正常发育中，但是在时间上不象激素处理后那样集中，这可能由于在发育中激素是缓慢释放的。激素处理 5分钟之内能迅速诱发一些胀泡称早期胀泡。例如黑腹果蝇的23E，74EF，75B等。另一些胀泡叫做晚期胀泡出现在激素处理较长时间以后 (4小时以上)这种胀泡的数目较多，约100个以上，其中主要的有62E，78D，22C，63E和82F等。另一方面，激素的处理可使某些原有的胀泡萎缩（例如25AC）。
如果在蛋白质合成受到抑制的条件下（例如用放线菌酮等）,使唾腺受到激素处理，仍能诱发早期胀泡,但不能诱发晚期胀泡。这说明早期胀泡的形成不需要蛋白质合成，晚期胀泡的形成可能是早期胀泡基因产物作用的后果。早期胀泡的活性始终依赖于蜕皮激素，一旦除去激素后胀泡就萎缩；而晚期胀泡在没有激素存在时仍能正常地出现，也说明这一情况。此外，早期和晚期胀泡对蜕皮激素浓度的反应不同，早期胀泡74EF起反应的范围很宽（可相差500倍，但晚期胀泡(62E)起反应的范围较窄（仅相差4倍）。
热休克 果蝇幼虫唾腺经高温(例如37℃，40分钟)处理后多线染色体出现明显的变化，许多胀泡萎缩，原来活跃的基因被抑制。与此同时，一组特异基因被激活，从而出现一些特异性胀泡。这一现象叫做热休克，所产生的胀泡叫做热休克胀泡（或称热诱发胀泡）。胀泡的大小与热休克处理的激烈程度有关。
果蝇多线染色体对热休克刺激的反应发生在基因表达的不同水平上。在转录（即RNA合成）水平，至少有3种反应:①诱发合成一组热休克RNA，其中有些能被翻译成热休克蛋白质；②抑制了在25℃时进行的大多数其他mRNA的合成；③中断了5S和18S+28S核糖体RNA基因转录产物的正常加工。
用3H尿苷掺入多线染色体的放射自显影试验，以及抗 RNA聚合酶Ⅱ抗体和抗染色体蛋白质的单克隆抗体在多线染色体上的分布的定位研究表明,在一般情况下,胀泡和间带是 RNA合成的活跃场所。然而经热休克处理后，RNA 聚合酶Ⅱ在转录上活跃的热休克胀泡处迅速积累起来，对染色体蛋白质专一的单克隆抗体的染色体上的分布也集中在热休克胀泡上，同时从其他区域上消失，这说明热休克胀泡是转录和转译的活跃场所。热休克处理后在转译水平上所发生的变化，一方面是诱发少数热休克多肽的合成，另一方面是抑制了原来在25℃培养时出现的大多数蛋白质的合成。热休克开始后10分钟,用35S-甲硫氨酸掺入法和SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳并将它们分成几条带。有关热休克多肽的确切数目，比较一致的看法是,在黑腹果蝇中主要有8种不同多肽，而在果蝇中有6种多肽。现已有直接证据表明,特异的热休克胀泡能编码特殊的热休克蛋白质。
由于多线染色体上的胀泡的变化直接反映了基因转录活性的变化,因此随着克隆重组DNA和原位分子杂交技术的发展，对多线染色体的研究必将为揭示真核生物基因的调控机制作出贡献。
1881年E.G.巴尔比安尼首先在双翅目摇蚊 (Chiro-nomus)幼虫的唾腺细胞中观察到多线染色体，但未引起注意。1933年在遗传学成就的影响下T.S.佩因特在果蝇唾腺,E.海茨和H.鲍尔等在毛蚊属(Bibio)再次看到这种染色体后，人们才予重视。此后在昆虫的多种组织如肠、气管、脂肪体细胞和马尔皮基氏管上皮细胞内以及在其他动植物的一些高度特化细胞如某些原生动物及附子属(Aconitum)植物的反足细胞里也发现了这种巨大染色体。
用显微镜观察多线染色体，只须把腺体等材料放在一滴固定剂和染色剂的混合液中用玻片压破腺体细胞核，即可看到多线染色体分散出来。
形态结构 并行排列的染色质纤维 多线染色体是DNA多次复制后所产生的子染色体整齐排列,紧密结合在一起而形成的 (图1)。它所在的细胞在此过程中处于永久间期阶段，不分裂，因而随着复制的不断进行，核体积不断增加，多线化细胞的体积也相应增大。
同种动物的不同组织以及不同动物的相同组织的多线化程度各不相同。例如摇蚊马尔皮基氏管细胞的染色体最多能复制 9次，从而使每对同源染色体组含有 512（29）条染色单体；唾腺细胞染色体复制13次，因而含有8192（213）条染色单体。
带和间带 沿着多线染色体的长轴有一系列深色的带和透亮的间带交替排列。带上的 DNA纤维高度卷曲，DNA 含量高，故能用碱性染料着色，呈孚尔根阳性反应，260纳米紫外光吸收强；间带的DNA含量低，不能用碱性染料着色,呈孚尔根阴性反应，260纳米紫外光吸收弱。
各种多线染色体上带的数目、形态、大小及其分布位置都很稳定。带和间带的分布图谱简称带谱。C.B.布里奇斯首先建立起黑腹果蝇唾腺染色体的带谱。至今已知该带的总数约有5000多条。图2示4条染色体，分别命名为X；2L(左臂)和2R(右臂);3L和3R；4。从X染色体的远端开始,依次将全部染色体分成102个区域。每一个区域可再进一步划分成A、B、C等小区域（图2）。从左边开始可将每个小区域里的带、间带和胀泡依次编号。不同带的形态和大小变化很大，同一条染色体在不同情况下其带谱不同。其他一些物种的详细带谱也有报道。
带谱与遗传图谱 把用杂交试验得到的果蝇多线染色体的遗传图谱与正常的带谱比较，可以看出每条带相当于一个遗传单位，并且可以鉴定出许多具有特殊遗传功能的带的位置。在特殊情况下，一条带可能同时有几个结构基因。例如,用原位杂交法曾经证明5SRNA基因的大部分拷贝位于2R的一条带(56F)上;组蛋白mRNA只能杂交到2L的两条带和它们之间的间带(39D-39E)上。
胀泡与基因表达 在个体发育的某个阶段或某些化学物质的诱发下，多线染色体的某些带纹变得疏松膨大而形成胀泡。最大的胀泡叫做巴尔比安尼氏环。胀泡是基因转寻和翻译的形态学标志,在这里DNA解旋呈开放环，RNA的合成很活跃；核糖体排列成多聚核糖体长链,多肽链的长度有一个梯度，甚至还可观察到从巴尔比安尼环上新合成的蛋白质分泌颗粒。
在一种摇蚊 (C.pallidivittatus)唾腺前叶细胞的染色体4上,近着丝点处有巴尔比安尼环4,这些细胞能分泌特异的蛋白质颗粒。然而,在另一种摇蚊(C.tentanus)中则没有巴尔比安尼环4,也没有这种分泌颗粒。这两种动物的杂交试验表明，编码分泌颗粒蛋白质的结构基因位于染色体4的巴尔比安尼环4上。
在尖眼蕈蚊 (Sciara coprophila)等动物还发现有一种非常特殊的胀泡──DNA胀泡。3H-胸腺嘧啶核苷和3H-尿嘧啶核苷能掺入这种胀泡。它们是额外的DNA复制区域（图3），其转录活性和5-甲基胞嘧啶含量之间有反相关性。
激素与胀泡 在双翅目昆虫唾腺的正常发育过程中，胀泡的出现是一种周期性的可逆现象。在一定的时期内，幼虫的不同组织里会有胀泡的出现、生长和消失过程。运用诱导胀泡形成的一些因子，如将蜕皮激素注射到幼虫或将它加入培养的唾腺中去则会在多线染色体上诱发出特殊的胀泡，所诱发胀泡的大小与所用激素的量有关。这些胀泡也出现在正常发育中，但是在时间上不象激素处理后那样集中，这可能由于在发育中激素是缓慢释放的。激素处理 5分钟之内能迅速诱发一些胀泡称早期胀泡。例如黑腹果蝇的23E，74EF，75B等。另一些胀泡叫做晚期胀泡出现在激素处理较长时间以后 (4小时以上)这种胀泡的数目较多，约100个以上，其中主要的有62E，78D，22C，63E和82F等。另一方面，激素的处理可使某些原有的胀泡萎缩（例如25AC）。
如果在蛋白质合成受到抑制的条件下（例如用放线菌酮等）,使唾腺受到激素处理，仍能诱发早期胀泡,但不能诱发晚期胀泡。这说明早期胀泡的形成不需要蛋白质合成，晚期胀泡的形成可能是早期胀泡基因产物作用的后果。早期胀泡的活性始终依赖于蜕皮激素，一旦除去激素后胀泡就萎缩；而晚期胀泡在没有激素存在时仍能正常地出现，也说明这一情况。此外，早期和晚期胀泡对蜕皮激素浓度的反应不同，早期胀泡74EF起反应的范围很宽（可相差500倍，但晚期胀泡(62E)起反应的范围较窄（仅相差4倍）。
热休克 果蝇幼虫唾腺经高温(例如37℃，40分钟)处理后多线染色体出现明显的变化，许多胀泡萎缩，原来活跃的基因被抑制。与此同时，一组特异基因被激活，从而出现一些特异性胀泡。这一现象叫做热休克，所产生的胀泡叫做热休克胀泡（或称热诱发胀泡）。胀泡的大小与热休克处理的激烈程度有关。
果蝇多线染色体对热休克刺激的反应发生在基因表达的不同水平上。在转录（即RNA合成）水平，至少有3种反应:①诱发合成一组热休克RNA，其中有些能被翻译成热休克蛋白质；②抑制了在25℃时进行的大多数其他mRNA的合成；③中断了5S和18S+28S核糖体RNA基因转录产物的正常加工。
用3H尿苷掺入多线染色体的放射自显影试验，以及抗 RNA聚合酶Ⅱ抗体和抗染色体蛋白质的单克隆抗体在多线染色体上的分布的定位研究表明,在一般情况下,胀泡和间带是 RNA合成的活跃场所。然而经热休克处理后，RNA 聚合酶Ⅱ在转录上活跃的热休克胀泡处迅速积累起来，对染色体蛋白质专一的单克隆抗体的染色体上的分布也集中在热休克胀泡上，同时从其他区域上消失，这说明热休克胀泡是转录和转译的活跃场所。热休克处理后在转译水平上所发生的变化，一方面是诱发少数热休克多肽的合成，另一方面是抑制了原来在25℃培养时出现的大多数蛋白质的合成。热休克开始后10分钟,用35S-甲硫氨酸掺入法和SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳并将它们分成几条带。有关热休克多肽的确切数目，比较一致的看法是,在黑腹果蝇中主要有8种不同多肽，而在果蝇中有6种多肽。现已有直接证据表明,特异的热休克胀泡能编码特殊的热休克蛋白质。
由于多线染色体上的胀泡的变化直接反映了基因转录活性的变化,因此随着克隆重组DNA和原位分子杂交技术的发展，对多线染色体的研究必将为揭示真核生物基因的调控机制作出贡献。
说明：补充资料仅用于学习参考，请勿用于其它任何用途。
参考词条